EJERCICIO 12
Elabore una herramienta informática que permita calcular la antipatía de hidrofobicidad de un segmento de secuencia peptídica mediante el cáculo de momentos de Eisenberg y mediante el espectro de potencias de Fourier de Stroud. Compare los resultados de ambos procedimientos obteniendo las gráficas correspondientes al perfil antipático de un segmento de secuencia C-terminal de 20 residuos de la proteína asignada.
La hidrofobicidad se puede entender como un balance de
energía libre, de forma que se disminuye la energía potencial y se puede favorecer
el acercamiento de 2 grupos próximos (enlace hidrofóbico), aunque también se
puede hablar de la hidrofobicidad como la repulsión de moléculas al agua.
La interacción hidrofóbica entre los distintos grupos y con
el entorno es una característica esencial para la estructura y plegamiento de
la proteína. Con un disolvente acuoso, a diferencia de los grupos polares, los
grupos hidrofóbicos tienden a acercarse y huir del disolvente. Por tanto,
cuando una proteína está en conformación nativa observaremos un núcleo
hidrofóbico y una superficie polar. La hidrofobicidad se puede usar como
herramienta de estimación de la estructura secundaria de la proteína, ya que
zonas altamente hidrofóbicas serán aquellas que se encuentren alejadas del
disolvente, o bien en regiones transmembrana o bien enterradas en el interior
de la proteína, y zonas polares se ubicarán en la parte exterior de la
estructura.
Para el estudio de la hidrofobicidad de una proteína es
esencial centrarse en las cadenas laterales, ya que los átomos principales,
pese a que sean los más reactivos (N y O), se encuentran enlazados y son
comunes a todos los aminoácidos.
Hemos realizado una aplicación denominada ‘Perfiles’ que va
a representar el perfil de hidrofobicidad y de anfipatía por los métodos de
Stroud y Eisenberg a partir de una proteína dada.
Debido a la dificultad de interpretación de una proteína
entera directamente, utilizaremos en este programa la suavización de
Savistzky-Golay con un algoritmo de Moving Average, por el cual se toman unos pocos
aminoácidos y al residuo central se le asigna el promedio de esa ventana. De
este modo es conveniente que el aminoácido central tenga el mismo número de
residuos a cada lado, de forma que el tamaño de la ventana ha de ser impar; por
ello, lo que le pediremos al usuario será que defina el tamaño de una
semiventana. Además, para evitar que la ventana coja valores más allá del
límite de mi proteína crearé una ventana flexible que disminuya su tamaño
cuando me acerque a los extremos, por lo que en el bucle que recorre los
residuos seleccionados en la ventana estableceré unos máximos y mínimos, de
forma que se coja o bien el mayor o el menor número, respectivamente, de los
que hay dentro del paréntesis.
Para crear este programa y poder usar un código de números
que representen la hidrofobicidad asociado a las letras de los aminoácidos,
definiré previamente en Biotools un nuevo tipo denominado TEscala, que será
un tipo array[‘A’…’Z’] of real. Además, he de saber el número del residuo en el
conjunto de la proteína, no en esa subunidad en concreto, de forma que usaré
p.sub[].resindex[], que me hará referencia al verdadero número de serie del
residuo.
Para la representación de la hidrofobicidad hemos realizado
dos bucles, uno dentro de otro, de forma que coja los residuos de la ventana y
vaya calculando en ella la media de las hidrofobicidades. En la primera fila de
la matriz datos representaré las abscisas indicando el residuo en el que me
encuentro y en la segunda las ordenadas, que hace referencia a la media de las
hidrofobicidades de esa ventana. Para la representación de la anfipatía por el
método de Eisenberg y de Stroud las funciones seguirán la misma lógica, aunque
con fórmulas distintas.
Vamos a definir una variable 'delta' que hace referencia a la
distancia angular entre los residuos. En el caso de las hélices alfa, debido a
que tienen 3,6aa por vuelta de hélice y una circunferencia tiene 360º, delta
será de 100. En el caso de las estructuras beta, como tienen 2 aa/vuelta, delta será 180. Sabiendo esto, al ejecutar el programa voy a establecer primero
delta como 100 y luego como 180 para observar así las hélices alfa y hojas beta
que se encuentran en mi proteína.
Cabe remarcar que la hidrofobicidad no es lo mismo que la
anfipatía, como se observa en las representaciones que se muestran a
continuación, ya que la primera hace referencia a la acumulación de los
residuos hidrofóbicos en un segmento y la segunda se refiere a la mayor o menor
diferencia de hidrofobicidades totales entre ambos lados de un cilindro
imaginario que contiene la estructura de la proteína. Una anfipatía elevada
implica una alta diferencia de hidrofobicidad, lo que no tiene porqué
significar una hidrofobicidad elevada.
A continuación, observamos las representaciones en la
aplicación creada al insertar la proteína ACE2. En la Fig. 1 se ha
establecido un delta de 100, por lo que altos picos en los índices de
hidrofobicidad se reflejarán probablemente en hélices alfa en la proteína. En
la Fig. 2 delta es de 180.
Fig. 1. Resultado al ejecutar la aplicación 'Perfiles' con IR42.pdb con un delta de 100.
Fig. 1. Resultado al ejecutar la aplicación 'Perfiles' con IR42.pdb con un delta de 100.
En primer lugar, cabe destacar que la hidrofobicidad no se
ve alterada cuando modificamos la distancia angular, puesto que, como se ha
explicado, simplemente hace referencia a regiones de la proteína, donde altos
picos indican que es una zona más hidrofóbica que presumiblemente se
encontrará alejada del disolvente polar, y picos bajos se referirán a regiones
más polares, independientemente del plegamiento posterior y vueltas de hélice
de la proteína.
ACE2 es una proteína de membrana, por lo que es coherente
que observemos en la región central una zona altamente hidrofóbica, que será la
que se dirigirá a la región transmembrana.
Por otro lado, observamos que los perfiles de Stroud y de Eisenberg son distintos al perfil hidrofóbico pero semejantes entre sí, ya que ambos se refieren a la anfipatía de la proteína.
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